细胞内蛋白流式检测

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细胞内蛋白流式检测技术解析

检测样品 细胞内蛋白流式检测的样品主要来源于体外培养的细胞系、外周血单核细胞（PBMC）、组织分离的原代细胞或特定疾病模型中的细胞样本。样品需经过预处理，包括细胞收集、固定、破膜等步骤，以确保目标蛋白的稳定性和抗体的有效结合。

检测项目 检测项目涵盖多种胞内蛋白，例如：

• 细胞因子（如IL-2、IFN-γ、TNF-α）
• 信号通路蛋白（如磷酸化STAT3、Akt、ERK）
• 功能标志物（如Ki-67、Granzyme B）
• 表观调控蛋白（如组蛋白修饰蛋白） 此外，还可结合细胞表面标记物（如CD3、CD4、CD8）进行多参数分析，实现细胞亚群的特异性检测。

检测方法

1. 细胞固定与破膜：使用含多聚甲醛的固定液稳定细胞结构，随后以皂苷或Triton X-100破膜，暴露胞内抗原。
2. 抗体孵育：加入荧光标记的一抗或间接标记的二抗，靶向目标蛋白。需优化抗体浓度及孵育时间，减少非特异性结合。
3. 洗涤与重悬：多次离心去除未结合抗体，以PBS或流式缓冲液重悬细胞。
4. 多色荧光方案设计：根据蛋白表达丰度及荧光染料光谱重叠性，选择兼容的荧光组合（如FITC、PE、APC、BV421）。
5. 对照设置：包括同型对照、未染色对照及阳性/阴性对照，确保结果准确性。

检测仪器 实验采用流式细胞仪完成数据采集与分析，常用设备包括：

• BD FACSCanto™ II：配置3激光（488 nm、640 nm、405 nm）和8色检测通道，支持高通量多参数分析。
• Beckman CytoFLEX LX：具备高灵敏光电倍增管（PMT），适用于低丰度蛋白检测。
• Attune NxT：声波聚焦技术提升检测速度，适合大规模样本筛选。

数据分析与结果解读 原始数据通过FlowJo或仪器配套软件（如BD FACSDiva™）处理。关键步骤包括：

1. 设门策略：通过FSC/SSC排除碎片，结合表面标记圈定目标细胞群。
2. 荧光强度统计：以Median Fluorescence Intensity（MFI）或阳性细胞百分比量化蛋白表达水平。
3. 多参数关联分析：结合不同蛋白表达数据，解析细胞功能状态或信号通路活性。

技术优势与应用领域 该技术广泛用于免疫学研究、肿瘤微环境分析、药物靶点验证及临床诊断。其高灵敏度、单细胞分辨率及多参数检测能力，为揭示疾病机制及开发精准疗法提供重要支持。

注意事项

• 避免细胞过度固定导致抗原表位破坏。
• 胞内蛋白易降解，建议使用蛋白转运抑制剂（如Brefeldin A）预处理活细胞。
• 多色实验中需定期校准仪器，补偿荧光溢漏。

通过规范化的操作流程与严谨的数据分析，细胞内蛋白流式检测可高效揭示细胞功能与分子调控网络，成为生命科学研究的核心工具之一。

实验仪器

测试流程

注意事项

1.具体的试验周期以工程师告知的为准。

2.文章中的图片或者标准以及具体的试验方案仅供参考，因为每个样品和项目都有所不同，所以最终以工程师告知的为准。

3.关于（样品量）的需求，最好是先咨询我们的工程师确定，避免不必要的样品损失。

4.加急试验周期一般是五个工作日左右，部分样品有所差异

5.如果对于（细胞内蛋白流式检测）还有什么疑问，可以咨询我们的工程师为您一一解答。