裸鼠成瘤小鼠检测

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裸鼠成瘤实验检测分析报告

检测样品

本实验采用人源肿瘤细胞系（如HepG2肝癌细胞、A549肺癌细胞等）接种于BALB/c-nu裸鼠皮下。实验动物为6-8周龄雌性裸鼠，体重18-22 g，共分为实验组与对照组，每组6只。所有操作均符合伦理规范，实验动物于SPF级环境中饲养。

检测项目

1. 肿瘤体积动态监测：记录接种后肿瘤生长曲线。
2. 瘤体重量分析：解剖后测量最终瘤体湿重。
3. 组织病理学检查：通过HE染色观察肿瘤组织形态及侵袭性。
4. 分子标志物检测：包括Ki-67（增殖标记）、CD31（血管生成标记）等免疫组化分析。

检测方法

1. 细胞接种与模型建立

   • 将肿瘤细胞悬液（密度1×10^7 cells/mL）注射至裸鼠右侧腋下皮下，每只注射100 μL。
   • 对照组注射等体积PBS缓冲液。

2. 肿瘤体积测量

   • 使用游标卡尺测量肿瘤长径（L）与短径（W），按公式计算体积：V = 0.5 × L × W²。
   • 每周测量3次，持续4周。

3. 样本采集与处理

   • 实验终点麻醉处死裸鼠，完整剥离瘤组织并称重。
   • 取部分瘤体固定于4%多聚甲醛，用于石蜡包埋及切片。

4. 病理与分子检测

   • HE染色：观察肿瘤细胞核形态、坏死区域及基质浸润情况。
   • 免疫组化：采用SP法检测Ki-67、CD31等蛋白表达水平。

检测仪器

1. 活体成像系统：小动物专用成像仪（型号：IVIS Lumina III）用于监测肿瘤原位荧光标记（如有）。
2. 电子游标卡尺：精度0.01 mm，测量肿瘤长宽。
3. 分析天平：METTLER TOLEDO ME204E型，称量瘤体湿重。
4. 病理切片设备：Leica RM2235轮转式切片机制备4 μm厚度组织切片。
5. 显微镜与成像系统：Olympus BX53光学显微镜搭配DP80双摄像头，采集HE及免疫组化图像。

结论

通过系统化检测裸鼠成瘤模型的肿瘤生长趋势、病理特征及分子表型，本实验可为抗肿瘤药物筛选及机制研究提供可靠数据支持。标准化操作流程与高精度仪器的应用确保了实验结果的重复性与科学性。

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实验仪器

测试流程

注意事项

1.具体的试验周期以工程师告知的为准。

2.文章中的图片或者标准以及具体的试验方案仅供参考，因为每个样品和项目都有所不同，所以最终以工程师告知的为准。

3.关于（样品量）的需求，最好是先咨询我们的工程师确定，避免不必要的样品损失。

4.加急试验周期一般是五个工作日左右，部分样品有所差异

5.如果对于（裸鼠成瘤小鼠检测）还有什么疑问，可以咨询我们的工程师为您一一解答。